2 水環(huán)境治理中病原菌的無損檢測技術(shù)
近些年,水環(huán)境治理中病原菌的檢驗(yàn)獲得了一定的研究成果,已從單一根據(jù)塑造法的傳統(tǒng)式病原菌檢驗(yàn)方式發(fā)展趨勢至多種多樣生物學(xué)檢驗(yàn)方式 ,這種技術(shù)性的發(fā)生和發(fā)展趨勢為病原菌檢驗(yàn)帶來了新的構(gòu)思。水環(huán)境治理中病原菌無損檢測技術(shù)的發(fā)展趨勢見圖 1。
現(xiàn)階段最大多數(shù)的病原菌檢驗(yàn)方式是塑造法和聚合酶 鏈 式 反 應(yīng) ( Polymerase Chain Reaction, PCR) 。這 2 種方式在可選擇性和敏感度層面都很突顯,但塑造法比 PCR 法更用時(shí)。一些新起的方式如生物傳感器已經(jīng)研發(fā)中,其以后的發(fā)展趨向是達(dá)到成本低、高可選擇性規(guī)定。轉(zhuǎn)錄組測序因?yàn)閿U(kuò)散系數(shù)高和不必非特異引物設(shè)計(jì)等優(yōu)勢正逐步代替?zhèn)鹘y(tǒng)式檢驗(yàn)方式 ,但也存有差錯(cuò)率高局限。近些年病原菌檢驗(yàn)辦法的檢出限以及運(yùn)用見表 2?,F(xiàn)階段,病原菌檢驗(yàn)方式還存有類似亞種無法區(qū)別、高致病及試品濃縮產(chǎn)生的抑止物等難題,這對新檢驗(yàn)辦法的研發(fā)是很大挑戰(zhàn)。
2. 1 PCR 和即時(shí)定量分析 PCR PCR 是現(xiàn)階段病原菌檢測中運(yùn)用最普遍的分子結(jié)構(gòu)
分子生物學(xué)方式之一,其根據(jù)增加特殊的靶基因序列來進(jìn)行病原菌檢驗(yàn)。關(guān)鍵根據(jù)轉(zhuǎn)性、淬火和拓寬( 淬火和拓寬還可以一起開展) 3 個(gè)流程最后達(dá)到目標(biāo)編碼序列的指數(shù)值變大。我國出入境簽證檢驗(yàn)檢測國家標(biāo)準(zhǔn)( SN/T 1896—2007) 中選用 PCR 技術(shù)性對食物中的各種病原菌( 沙門菌、志賀氏菌、橙黃色鏈球菌、小腸結(jié)腸炎耶爾森氏菌、單核細(xì)胞增長李斯特氏菌、空腸彎曲菌、腸滲出性腸子埃希氏菌 O157: H7、副血溶弧菌、霍亂弧菌和創(chuàng)傷弧菌) 開展迅速判定檢驗(yàn)。
實(shí) 時(shí) 定 量 PCR ( quantitative real-time PCR, qPCR) 是在 PCR 技術(shù)性基本上運(yùn)用瑩光數(shù)據(jù)信號值即時(shí)檢驗(yàn)?zāi)康幕?,根?jù)內(nèi)參或外參法對樣本中的特殊遺傳基因開展定性分析,比基本 PCR 更加靈巧。已經(jīng)有大量的科學(xué)研究選用 qPCR 方式定量分析病原菌,如大腸桿菌和沙門菌 等。各自選用qPCR 方式與傳統(tǒng)式塑造法檢驗(yàn)仙河鎮(zhèn)水質(zhì)采樣中大腸埃希菌和腸 球 菌,發(fā) 現(xiàn) qPCR 方式的檢出限能做到1 CFU/100 mL,明顯好于傳統(tǒng)式塑造法。可是 qPCR也存有 DNA 回收利用高效率低和對引物設(shè)計(jì)非特異規(guī)定高的難題。除此之外,qPCR 在檢測中還遭遇別的一些挑戰(zhàn),如反映中存有 PCR 抑止物。即便小量的PCR 抑止物也會延遲時(shí)間繁雜試品的閥值循環(huán)系統(tǒng)( Cq ) ,進(jìn)而造成模版拷貝數(shù)比具體值低。為避免假陰性結(jié)果的發(fā)生,可在 PCR 反映中添加對抑止物具備高靈敏的內(nèi)部陽性對照( 如內(nèi)參基因) 開展檢驗(yàn)。除此之外,獲取全過程中殘存的抑止物如胍鹽和甲酸可選用 QuickDrop 和 NanoDrop 光度計(jì)檢驗(yàn),還可以根據(jù)凝膠電泳明確是不是有 RNA、DNA 及蛋白質(zhì)環(huán)境污染。假如試品中帶有蛋白質(zhì)等其它雜物的環(huán)境污染,能夠采用磁珠開展核苷酸提純。此外,qPCR 無法識別活菌或死菌,會造成陽性結(jié)果?,F(xiàn)階段,一般 采 用 疊 氮 溴 化 丙 錠 ( propidium monoazide, PMA) 對試品開展前理,進(jìn)而防止陽性結(jié)果的造成。PMA 是一種高寬比感光的 DNA 融合染劑,不可以通過完善的活細(xì)胞質(zhì),卻能可選擇性地通過不詳細(xì)的死細(xì)胞質(zhì)。PMA 能與 DNA 融合產(chǎn)生不可逆化學(xué)鍵,抑止死細(xì)胞 DNA 的增加以做到區(qū)別死、體細(xì)胞的目地。
除此之外,PCR 與 qPCR 針對病原菌的大批量檢驗(yàn)存有一定的局限。對于以上難題,多種 PCR、微滴 式 數(shù) 字 PCR 等技術(shù)性陸續(xù)造成。多 重 PCR ( multiplex PCR,mPCR) ,又被稱為多種引物設(shè)計(jì) PCR 或復(fù)合型 PCR,是在同一 PCR 反映管內(nèi)與此同時(shí)再加上多種多樣非特異引 物 進(jìn) 行 PCR 擴(kuò) 增。微 滴 式 數(shù) 字 PCR ( Droplet Digital PCR,ddPCR) 是第三代 PCR 技術(shù)性,歸屬于單分子結(jié)構(gòu)剖析,可用以肯定定量分析。用 ddPCR 和 qPCR 記數(shù)江河自然環(huán)境中的沙門菌,發(fā)覺水里 ddPCR 的精確度和線形范疇與 qPCR 非常,但堆積物試樣中 ddPCR 的精確度和線形范疇顯著高些。多種 PCR 和微滴式數(shù)據(jù) PCR 技術(shù)性都解決了傳統(tǒng)式 PCR 方式高成本費(fèi)、擴(kuò)散系數(shù)比較有限、步驟繁雜、精準(zhǔn)度劣等缺陷??墒?mPCR 存有多總體目標(biāo)增加標(biāo)準(zhǔn)不兼容的難題,ddPCR 檢驗(yàn)濃度較高的試品時(shí)的線性顯著降低。
2. 2 等溫?cái)U(kuò)增技術(shù)性
近些年新發(fā)展起來的等溫?cái)U(kuò)增技術(shù)性,不論是操作過程或是儀器設(shè)備規(guī)定層面都比 PCR 技術(shù)性更加簡潔便捷,在臨床醫(yī)學(xué)和當(dāng)場檢測中有著優(yōu)良的市場前景,在其中,環(huán)受體等溫?cái)U(kuò)增( LAMP) 早已獲得一定的運(yùn)用。該技術(shù)性是一種新式的核苷酸增加方式,其具體機(jī)理是應(yīng)用 4 條非特異引物設(shè)計(jì)各自鑒別靶DNA的 6 個(gè)特殊地區(qū),根據(jù)鏈置換反應(yīng)完成等溫過程標(biāo)準(zhǔn)下遺傳基因的迅速增加。該辦法的特點(diǎn)是敏感度高( 檢出限比傳統(tǒng)式的 PCR 方式低 2 ~ 5 個(gè)量級) 、反應(yīng)速度短( 30 ~ 60 min) 、臨床醫(yī)學(xué)應(yīng)用不用獨(dú)特儀器設(shè)備和使用簡易( 反映液、酶和模版的溶液放置 63 ℃ 上下恒溫水浴鍋或恒溫箱中 30 ~ 60 min) 。應(yīng)用改性材料的 LAMP 定性分析地面中的大腸埃希菌和傷寒論沙門菌,敏感度采樣率為 0. 3 ~ 10 000 cells/mL,濃度較高的抑止物對定量分析結(jié)果危害較小,且 1 h 內(nèi)可以進(jìn)行檢驗(yàn)。LAMP 技術(shù)性根據(jù) 4 ~ 6 個(gè)引物設(shè)計(jì)的融合,因此比 qPCR 增加高效率低,也經(jīng)常因非特異性增加發(fā)生陽性結(jié)果。現(xiàn)階段較常用的避免陽性結(jié)果產(chǎn)生的辦法具體包含:
( 1) 應(yīng)用特殊構(gòu)造的PCR 管,該管內(nèi)有一個(gè)穩(wěn)定的小擋板將管分為 2 個(gè)地區(qū),各自添加反映液和 DNA 染劑,但這些辦法提升了加液頻次,不適感用以大批檢驗(yàn);
( 2) 將染劑包埋在石臘中,反映完成后高溫熔融石臘從而釋放出來染劑,但該方式提升了前解決時(shí)間。